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将采集的姬玉露多肉的带有多个花蕾的花葶

日期:2018-12-24 13:07:47     浏览:19    
核心提示:将采集的姬玉露多肉的带有多个花蕾的花葶,在加了吐温-20,2~3滴的溶液中,用软毛刷轻轻刷洗,要仔细清洗花葶的每个部位,放在流动的自来水下冲洗30min,然后在超净工作台里进行表面消毒处理。
  2.2实验方法
 
2.2.1 不同消毒方式对花葶消毒的影响
 
将采集的姬玉露多肉的带有多个花蕾的花葶,在加了吐温-20,2~3滴的溶液中,用软毛刷轻轻刷洗,要仔细清洗花葶的每个部位,放在流动的自来水下冲洗30min,然后在超净工作台里进行表面消毒处理。用0.1%升汞消毒5min、8min、10min、12min,用无菌水冲洗外植体3-4次,每次1min,对比消毒效果。接种时在花葶上部有花蕾的部分切取带有1~2个花蕾的花葶将其垂直插在培养基中进行培养。接种7天后观察并记录花葶生长状态,并统计计算出不同消毒方法的污染率、死亡率、存活率。
 
2.2.2不同基本培养基对花葶丛生芽诱导的影响

 
将采集的姬玉露多肉的带有多个花蕾的花葶
 
以花葶为外植体,接种在激素组合为6-BA1.0mg/L+NAA0.5mg/L的培养基中。在MS,1/2MS,WPS,B5四种培养基中,筛选最适宜的基本培养基,接种后第15天开始进行观察记录外植体的生长状况。
 
2.2.3不同种类和浓度激素对花葶丛生芽诱导的影响
 
在筛选出的最适宜基本培养基上,附加不同浓度NAA和6-BA;不同浓度6-BA和IBA(见表1)。接种7d后记录花葶的生长状态的变化,统计不同培养基中丛生芽的生长情况,进行激素种类及浓度的筛选。
 
2.2.4不同种类和浓度激素对花葶丛生芽增殖的影响
 
将诱导出的花葶丛生芽,切成单芽,垂直插在培养基里。在所筛选的基本培养基上附加不同浓度6-BA(0.5、1、1.5、2.0)mg/L分别与NAA(0.1、0.3、0.5、1.0)mg/L和IBA(0.1、0.3、0.5、1.0)mg/L组合;不同浓度KT(0.5、1、1.5、2.0)mg/L分别与NAA(0.1、0.3、0.5、1.0)mg/L和IBA(0.1、0.3、0.5、1.0)mg/L组合,进行激素组合的筛选。
 
2.2.5不同消毒方式对叶片表面消毒的影响
 
将采集的姬玉露多肉的成熟叶片,加吐温-20,2~3滴,在溶液中,用软毛刷轻轻刷洗,要仔细清洗叶的每个部位,放在流动的自来水下冲洗30min,然后在超净工作台里进行表面消毒处理(见表2)。
 
如表1所示,编号1~编号4都是用不同种类、浓度和不同时间的消毒剂,进行消毒处理,在消毒过程中要不断轻轻晃动消毒瓶。编号5~编号8都是先用5%NaClO溶液消毒2min,用无菌水冲洗3次;然后将叶片放在添加2滴吐温-20的相同浓度升汞溶液进行不同消毒时间的对比试验,最后用无菌水冲洗3-4次,使附着在叶片表面的升汞溶液彻底冲洗掉,以免升汞残留造成外植体初代培养死亡。叶片消毒完成后,将其置于灭菌过的滤纸上,将表面水分吸干,用手术刀将叶片按上中下切分为三部分,接种在培养基中进行培养。接种20d后观察并记录叶片的变化,并统计不同消毒方法的污染率、存活率、死亡率。
 
2.2.6不同种类与浓度激素组合对叶片愈伤组织诱导的影响
 
叶片诱导愈伤组织试验,基本培养基选用的是MS。在MS培养基里,再附加不同种类及浓度激素(见表3)。激素筛选的方法是单因子试验方法。附加不同浓度的6-BA与NAA、KT与NAA,6-BA与2,4-D、KT与2,4-D。将切好的叶片平放在培养基中,放在培养箱中暗培养24小时。将叶片接入培养基10d后统计愈伤组织诱导率、愈伤组织形态及长势,每隔5d,统计一次数据。
 
2.2.7不同种类与浓度激素组合对叶片愈伤组织分化的影响
 
愈伤分化试验以MS为基本培养基,添加不同浓度组合的6-BA(0.5、1.0、2.0)mg/L与NAA(0.5、1.0、1.5)mg/L、6-BA((0.5、1.0、2.0)mg/L与IAA(0.5、1.0、1.5)mg/L、KT(0.5、1.0、2.0)mg/L与NAA(0.5、1.0、1.5)mg/L、KT(0.5、1.0、2.0)mg/L与IAA(0.5、1.0、1.5)mg/L,将接种后的培养基放在培养箱里暗培养,接种15d后,统计愈伤组织不定芽诱导率、不定芽长势和形态。
 
2.2.8壮苗培养壮苗试验采用的基本培养基为
 
MS,将愈伤组织上分化出的不定芽,切为4~5个芽一丛的小块,把芽丛接种到单独附加不同浓度NAA(0.2、0.5、0.8、1.5)mg/L、IBA(0.2、0.5、0.8、1.5)mg/L、IAA(0.2、0.5、0.8、1.5)mg/L的培养基中进行壮苗试验。2.2.9生根培养生根试验所用的基本培养基为1/2MS、WPM,切取生长健壮的不定芽,接入添加不同浓度NAA(0.5、1.0、1.5、2.0)mg/L,IBA(0.5、1.0、1.5、2.0)mg/L的培养基中进行生根试验。
 
2.2.10不同基质对组培苗移栽生长的影响
 
挑选根数多且健壮的再生植株进行炼苗,将装有组培苗的瓶,放在温室大棚里10~20天,遮阴度宜为50~70%。然后把瓶盖打开,放置3~7天注意遮阴,避免阳光直晒。将组培苗在瓶中取出,用流水把其根部的琼脂冲洗干净,最后植入经过消毒的不同基质(赤玉土:蛭石:泥炭土=3:1:1、赤玉土:蛭石:泥炭土=2:2:1、赤玉土:蛭石:泥炭土=1:1:3、赤玉土:蛭石:泥炭土=2:1:2)中,移出的试管苗一般在炼苗前4周遮阴要50%~90%,并采用喷雾洒水保持一定的湿度(85%左右),之后逐渐降低湿度和增强光照。2个月后统计移栽成活率。
 
2.2.11数据分析
 
本试验主要记录及分析的数据包括:污染率=(污染的外植体总数/接种数)×100%
 
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